Laise de Moraes
PhD Student - Health Sciences / UFBA / FIOCRUZ-BA
MSc. Laise de Moraes
2019
Princípio da técnica:
Gerar múltiplas cópias de uma sequência específica de nucleotídeos de um determinado organismo, com alta sensibilidade e especificidade.
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
1950 1960 1970 1980 1990
1953
Estrutura da dupla hélice do DNA
1967
Isolamento da bactéria Thermophilis aquaticus
1971
Método enzimático de replicação in vitro de pequenas sequências de DNA
1976
Taq polymerase a partir da enzima polimerase da bactéria Thermophilis aquaticus
1977
Método de terminação de cadeia para sequenciamento de DNA (Sequenciamento Sanger)
1983
Desenvolvimento da técnica PCR por Kary Mullis
1988
Automação da PCR
1989
Molécula do ano: Taq polymerase
1993
Prêmio Nobel de Química: Kary Mullis
qPCR
NGS
Taq high fidelity polimerase
Componentes necessários:
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
Manutenção da concentração dos reagentes
Manutenção do volume final da reação
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
pH ótimo para a atividade da DNA polimerase
Íons, detergentes, proteínas estabilizantes e DTT
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
uso em concentrações iguais dos 4 dNTPs
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
co-fator da DNA polimerase
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
enzima termoestável isolada a partir da bactéria Thermus aquaticus
atividade enzimática ótima à 72°C, porém, permanece estável até 94°C
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
oligonucleotídeo sintetizado quimicamente com base na sequência já conhecida do DNA-alvo
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2+
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
DNA extraído para a obtenção do fragmento de interesse
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Parâmetros de ciclagem:
"melting" ou desnaturação - separação da dupla fita de DNA ~ 1 minuto
"annealing" ou pareamento - ligação do primer ao DNA ~ 30 segundos
"extension" ou extensão - polimerização da fita complementar ~ 1 minuto
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
desnaturação inicial
desnaturação
pareamento
extensão
extensão final
hold
~94°C
~94°C
~52°C
~72°C
~72°C
4°C
30-40 ciclos
~24°C
início
~3 minutos
~1 minuto
~30 segundos
~1 minuto
~10 minutos
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Ciclos de PCR | Cópias de DNA |
---|---|
1 | 2 |
2 | 4 |
3 | 8 |
4 | 16 |
5 | 32 |
6 | 64 |
7 | 128 |
8 | 256 |
9 | 512 |
10 | 1.024 |
15 | 32.768 |
20 | 1.048.576 |
25 | 33.554.432 |
30 | 1.073.741.842 |
Visualização por Eletroforese:
- Baseia-se no fato da molécula de DNA possuir carga negativa
- O DNA migra do polo negativo (cátodo) para o polo positivo (ânodo)
- Tamanho da molécula proporcional à velocidade de migração
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
cuba de gel
vista lateral
amostra
gel
tampão
cátodo
ânodo
DNA
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Por que otimizar?
- Aumentar a eficiência/rendimento da reação (i.e. material para sequenciamento)
- Aumentar a especificidade (i.e. eliminar background, sombra dos primers
- Aumentar a reprodutibilidade
Quais parâmetros podem mudar?
- Concentração dos reagentes
- Componentes do tampão
- Condição dos ciclos
- Desenho dos primers
Especificidade | Rendimento | |
---|---|---|
Mg2++ | Menor | Maior |
Primers | Menor | Maior |
Temperatura de hibridização/pareamento |
Maior | Menor |
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Qual a melhor região para escolher?
GGCGTCCGCTTTGAGTCCAAGATCGTGGACGGCGGCTGCTTTGCCCCATG
GGACCTCGAGGCCACTGGAGCCTGCATCTGCGAGATCCCCACTGATGTCT
CGTGCGAGGGCTTGGGGGCCTGGGTACCCACAGCCCCTTGCGCGCGCATC
TGGAATGGCACACAGCGCGCGTGCACCTTCTGGGCTGTCAACGCCTACTC
CTCTGGCGGGTACGCGCAGCTGGCCTCTTACTTCAACCCTGGCGGCAGCT
AGTTTCATACAGAGACTAGGACCGTCTGGCAACTCTCCGTAGCCGGCGTG
TCGTGCGATGTCACCACTGAACACCCGTTCTGCAACACGCCGCACGGACA
ACTCGAGGTCCAGGTCCCGCCCGACCCTGGGGACATGGTTGAGTACATTA
CTGCTCGCGGCTTGTGGGGGCCACGCCAGAGCGTCCCCGGCTGCGCCTGG
TCGACGCCGACGACCCCCTGCTGCGCACTGCCCCTGGGCCCGGCGAGGTG
Região de interesse
Região de hibridização para o primer FORWARD
Região de hibridização para o primer REVERSE
Antigamente, as reações de PCR utilizavam primers criados manualmente e apenas com base na complementariedade com a região alvo
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
3'-GGACCTCGAGGCCACTGGAGCCTGCATCTGCGAGATCCCCACTGATGTCTCGTGCGAGGGCTT |||||||||||||||||||||||||||||||||||
5'-CGGTGACCTCGGACGTAGACGCTCTAGGGGTGACT-3'
3'-GGACCTCGAGGCCACTGGAGCCTGCATCTGCGAGGCCACTGGAGATGTCTCGTGCGAGGGCTT ||||||||| ||||||||| 5'-CGGTGACCT-3' 5'-CGGTGACCT
Primers muito longos são ineficiêntes na hibridização
Primers muito curtos perdem especificidade
aumentam as chances de formar grampos
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
C+G são ligações mais estáveis, isto porque são 3 ligações (ou pontes) de hidrogênio entre as bases
T+A são ligações menos estáveis, por conta da ligação "mais fraca" de 2 ligações (ou pontes) de hidrogênio
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
3'-GGACCTCGAGGCCACTGGAGCCTGCATCTGCGAGATCCCCACTGATGTCTCGTGCGAGGGCTT |||||||||||||||||
5'-ACCTCGGACGTAGACGC-3'
3'-GGACCTCGAGGCCACTGGAGCCTGCATCTGCGAGATCCCCACTGATGTCTAAGCGAGGGCTT |||||||||||||||||
5'-AGGGGTGACTACAGATT-3'
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Tm = temperatura em que 50% dos primers estão hibridizados
Ta = temperatura para hibridização
Tm = 4(G +C) + 2(A + T) °C
Ta = Tm - 5°C
No caso do emprego de dois primers ou mais, as Tms devem ser compatíveis
Ta baixa: aumenta eficiência da PCR, porém diminui a especificidade
Ta alta: aumenta a especificidade, porém diminui a eficiência da PCR
Ta > 65°C: recomendada para alvos com elevado conteúdo GC
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
3'-TATCTAGGACCTTAAAGGG-5'
5'-GGGAA
3'-TATCTAGGACCTTA
como um grampo de cabelo
5'-GGGAA
3'-TATCTAGGACCTTA
HAIRPIN
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
5'-GGGAAAATTCCAGGATCTAT-3'
3'-TATCTAGGACCTTAAAAGGG-5'
5'-GGGAAAATTCCAGGATCTAT-3'
3'-TATCTAGGACCTTAAAAGGG-5'
5'-GGGAAAATTCCAGGATCTAT-3'
SELF-DIMER
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
PRIMER 1: 5'-AACTTGTACCTCCGTAAGC-3'
PRIMER-DIMER
PRIMER 2: 5'-TGGGATACAGTCGGA-3'
5'-AACTTGTACCTCCGTAAGC-3'
3'-AGGCTGACATAGGGT-5'
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
5'-AACTTGTACCTAAGCCCC-3'
3'-TGACAGTCGGGGAAAGGGGAAAGGGGAAGGGGAAGGGGTAGG
DNA MOLDE
Regiões rica em guaninas
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- PCR modificada para reduzir produtos não específicos
- Detecção de material em baixa quantidade na amostra
- 2 rounds de reação com diferentes pares* de primers
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
primer F
primer R
3'
5'
3'
5'
sequência alvo
3'
5'
3'
5'
1º round com par de primers "outer"
2º round com par de primers "inner"
sequência alvo
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
1º round
- Produto inespecífico
2º round
- Produto específico
- Maior concentração
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Reverse transcription polymerase chain reaction
- Transcrição de RNA em cDNA (DNA complementar)
- Utiliza a RNA de fita simples como molde para sintetizar DNA de fita dupla
- Enzima transcriptase reversa
- cDNA + PCR em uma mesma reação: "One-Step"
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
AAA RNA
AAA cDNA
primer
fita complementar
transcrição reversa
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Oligo (dT): se liga à cauda poli-A do mRNA
Se for um pool de mRNA é ideal para manter homogenea a conversão e posterior PCR
Qual primer usar se não é PCR usual?
Random primer: pequena sequência de 6 bases
Ideal para sintese de cDNAs pequenos e de RNA não poliadenilado
Primer específico: mais específico, pois tem relação com o alvo da reação
3
3
2
1
Para two-step utilizando primer específico, o cDNA é sintetizado com o primer forward
1
2
3
- Metodologia da PCR + sistema de detecção de fluorescência em tempo real
- Detecção, quantificação e amplificação de DNA em uma única etapa
- Agilidade para a obtenção de resultados
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
SONDA (PROBE) COM FLUORESCÊNCIA
Oligonucleotídeo marcado
Componentes necessários:
- Água livre de nucleases
- Solução tampão
- Nucleotídeos ---> dNTPs
- Mg2++
- Enzima DNA polimerase
- Par de iniciadores ---> primers
- Amostra de DNA
CORANTE FLUORESCENTE
Intercalante de DNA de dupla fita
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
F
F
F
F
F
F
F
F
F
F
F
F
Taq
Taq
Desnaturação
Hibridização
Extensão
CORANTE FLUORESCENTE
Intercalante de DNA de dupla fita
- Detecção não específica
- Fluoróforo liga-se à DNA dupla fita e emite fluorescência
- Não permite multiplex
SYBR Green
Emissão de fluorescência
Emissão de fluorescência
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Detecção específica
- Sonda marcada com fluorórofo altamente específico à sequência alvo somente emite fluorescência na presença do produto de PCR de interesse
- Permite multiplex
- Baseia-se na atividade 5'-3' exonuclease
- QUENCHER e REPORTER na mesma molécula: transferência de energia
SONDA (PROBE) COM FLUORESCÊNCIA
Oligonucleotídeo marcado
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Localiza-se de 1 a 5 pares de bases do primer
- Tm deve ser aproximadamente 10°C maior que a Tm dos primers
- A primeira base não pode ser G (QUENCHER)
- Não pode ter mais G do que C e não deve ter 4 bases consecutivas iguais
Q
R
REPORTER
QUENCHER
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Q
R
5'
3'
5'
5'
3'
5'
3'
Q
R
5'
3'
5'
5'
3'
5'
3'
Q
R
5'
3'
5'
5'
3'
5'
SONDA (PROBE) COM FLUORESCÊNCIA
Oligonucleotídeo marcado
Primer F
Primer R
REPORTER
QUENCHER
Emissão de fluorescência
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Parâmetros de ciclagem:
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Threshold
CT - ciclo onde a reação cruza o limiar de detecção (THRESHOLD)
Baseline
(background)
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Quantificação absoluta: utilização de curva padrão conhecida e com quantidades acuradas para interpolar com os resultados das amostras (carga viral para HIV-1)
- Quantificação comparativa: determinação matemática a partir de um ou mais genes controles (expressão gênica - quantas vezes mais expressa em reação à algo)
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Amplificação simultânea de dois ou mais DNA-alvos em apenas uma reação
- No caso de qPCR, cada alvo terá uma marcação fluorescente distinta
- Menor tempo, menor custo e diminui etapas de pipetagem
- Possibilidade de controle interno na mesma reação
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
- Estratégia para obtenção do genoma completo
- Aplicação de pools de primers para obter sobreposição de regiões
pool 1
pool 2
preparação da biblioteca de sequenciamento
material para sequenciamento
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
pool 1
pool 2
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
tutorial prático para estudar
Clone or download
dist
analise-primer.exe
- Primer3web (version 4.1.0)
- Primer-BLAST
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast/
- Primer Design and Search Tool
http://bisearch.enzim.hu/?m=search
- PCR Primer Stats
http://www.bioinformatics.org/sms2/pcr_primer_stats.html
- Primal Scheme
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
LT964969.1
KY704955.1
Biologia Molecular: Desenho de Primers para PCR
MSc. Laise de Moraes
2019
By Laise de Moraes
30 de março de 2019 – Minicurso de Biologia Molecular: Desenho de Primes para PCR – VIII Simpósio de Biomedicina: "O presente e o futuro da Biomedicina" – Escola Bahiana de Medicina e Saúde Pública (EBMSP) - atualizado 24/06/2022